Question  |
Answer |
fizyczne metody sterylizacji start learning
|
|
Sterylizacja termiczna; Sterylizacja przez sączenie; Sterylizacja promieniowaniem;
|
|
|
|
start learning
|
|
Wyżarzanie lub spalanie; Proces UHT; Sterylizacja suchym gorącym powietrzem; Sterylizacja nasyconą parą wodną pod ciśnieniem
|
|
|
Sterylizacja promieniowaniem start learning
|
|
jonizującym; UV; mikrofalowym;
|
|
|
|
start learning
|
|
Sterylizacja gazami: tlenkiem etylenu formaldehydem, ozonem; Sterylizacja roztworami środków chemicznych: aldehydu glutarowego, kwasu nadoctowego,
|
|
|
Ultra high temperature processing (UHT) start learning
|
|
polega na błyskawicznym 1-2 sekundowym podgrzaniu do temp. ponad 100 °C (135-150 °C dla mleka) i równie błyskawicznym ochłodzeniu do temperatury pokojowej. Cały proces trwa 4-5 sek. Zabija to florę bakteryjną nie zmieniając walorów smakowych produktu.
|
|
|
Sterylizacja suchym gorącym powietrzem start learning
|
|
powoduje utlenianie; Aby materiał został wyjałowiony suche gorące powietrze musi przeniknąć do jego wnętrza – czas potrzebny na zajście
|
|
|
Sterylizacja parą wodną pod ciśnieniem start learning
|
|
Nasycona para wodna powoduje gwałtowną hydrolizę denaturację i koagulację enzymów i struktur komórkowych. temperatura: 108–134 °C;
|
|
|
Sterylizacja parą wodną pod ciśnieniem - zastosowanie start learning
|
|
roztwory wodne odzież ochronna, opatrunki, narzędzia
|
|
|
|
start learning
|
|
Sączki o średnicy porów 0,22 mikrometra usuwają z roztworu grzyby, pierwotniaki, bakterie, ich przetrwalniki oraz wirusy. sączki o średnicy porów 0,45 mikrometra zatrzymują tylko zanieczyszczenia mechaniczne i część bakterii.
|
|
|
|
start learning
|
|
czynnik o działaniu alkilującym bakterio- i wirusobójczy. W wyższych stężeniach niszczy też przetrwalniki. Tlenkiem etylenu wyjaławia się materiały i sprzęt medyczny z tworzyw sztucznych, które mogłyby odkształcać się po wpływem temperatury, np. cewniki.
|
|
|
kontrola leków do podawania pozajelitowego start learning
|
|
1. wizualna 2. szczelności zamknięć 3. ilości preparatu w naczyniu 4. fizykochemiczna odczynu r-rów 5. chemiczna tożsamości i zawartości
|
|
|
|
start learning
|
|
mikropory błony. Można wyróżnić 2 odrębne mechanizmy tego procesu: oddzielanie soli mineralnych i wychwyt subst. organicznych
|
|
|
|
start learning
|
|
Wyróżniamy pirogeny egzogenne i endogenne. Najlepiej znanym pirogenem egzogennym jest endotoksyna bakterii gram ujemnych (lipopolisacharyd). Wspólną cechą wszystkich pirogenów egzogennych jest to że mają one na tyle dużą
|
|
|
|
start learning
|
|
zmienia strukturę kwasów nukleinowych dlatego najsilniej działa na formy wegetatywne drobnoustrojów. Używa się fal o długości 210–328 nm (najbardziej aktywne jest promieniowanie o
|
|
|
|
start learning
|
|
1. szklane - temicznie w suszarce (122°C 20 min) 2. plastikowe - chemicznie (ogrzewać w r-rze środka przez 30min- T=90°C)
|
|
|
|
start learning
|
|
–hydrofobowe saczki membranowe; –filtry HEPA –promieniowanie nadfioletowe (210 - 328 nm najsk: 254)
|
|
|
|
start learning
|
|
1. suche gorące powietrze (200C, 1h; 250C, 30 min) 2. saczki ze spiekiem szklanym G5 3. saczki celulozowe 4.świece membranowe 5. ytrząsanie z węglem atywnym + dodatkowe sączenie klarujące przez sączek ze spiekiem szklanym G4
|
|
|
szkło - badanie obojętności chemicznej start learning
|
|
metoda powierzchniowa: 1. próba graniczna 2. miareczkowanie wyługowanych ze szkła alkaliów
|
|
|
kontrola jakości zamknięć gumowych start learning
|
|
ze względu na właściwości: 1. mechaniczne 2. chemiczne 3. biologiczne (toksyczności)
|
|
|
kontrola jakości zamknięć gumowych - właściwości mechaniczne start learning
|
|
badanie: 1. szczelności zamknięć 2. elastyczności po przebiciu igłą oraz siły zacisku igły 3. odporności na kruszenie podczas przebijania grubą igłą punkcyjną o śr. 2 4mm 4. kleistości
|
|
|
kontrola jakości zamknięć gumowych - właściwości chemiczne start learning
|
|
oznaczanie: 1. związków redukcyjnych 2. graniczna na cynk 3. na chlorki 4. zawartość metali ciężkich 5. zawartość soli amonowych 6. zmętnienia wyciągu wodnego 7. zmian odczynu (pH) 8. absorbancji w świetle ultrafioletowym
|
|
|
kontrola jakości zamknięć gumowych - właściwości biologiczne start learning
|
|
badanie toksyczności na: 1. myszach 2. rozwielitkach 3. królikach 4. spermie byków i hodowli tkankowej 5. hemolizę in vitro 6. rybach gupikach (Lebistes reticulatus)
|
|
|
|
start learning
|
|
1. sączki z wkładkami celulozowymi 2. sączki ze spiekiem szklanym G3, G4
|
|
|
|
start learning
|
|
1. sączki membranowe 2. sączki głębokie (z mat. włóknistych) 3. sączki zespolone
|
|
|
|
start learning
|
|
1. sączki ze spiekiem szklanym G5 2.świece membranowe 3. sączki celulozowe
|
|
|
przedmioty wyjaławiane suchym gorącym powietrzem start learning
|
|
1. metal 2. ceramika 3. szkło 4. niektóre ciecze (oleje parafina, wazelina) 5. proszki (talk ZnO)
|
|
|
przedmioty wyjaławiane parą wodną start learning
|
|
1. r-ry wodne 2. szkło 3. drobna aparatura (sączki metalowe i szklane) 4. tkaniny
|
|
|
wskaźniki temperatury wyjaławiania start learning
|
|
1. chemiczne (fenantren sorbitol, rezorcyna, tiomocznik) 2. orientacyjne - wata (brunatnaw T=180C, zwęglona przy 200C)3. biologiczne - kontrola skuteczności wyjaławiania
|
|
|
|
start learning
|
|
bioindykatory - B. subtilis B. cereus var. mycoides, B. megaterium, B. stearotermophilus na
|
|
|
|
start learning
|
|
1. czystości 2. przezroczystości 3. zabarwienia
|
|
|
|
start learning
|
|
1. badanie jałowości 2. nieobecności pirogenów 3. nieobecności substancji histaminopodobnych
|
|
|
badanie szczelności ampułek start learning
|
|
wyjęte z autoklawu ampułki zanurzyć w 0,5% r-rze błękitu metylowego. po kilku minutach wyjąć i opłukać. sprawdzić zabarwienie r-ru.
|
|
|
badanie na obecność zanieczyszczeń nierozpuszczalnych w płynach do wstrzykiwań start learning
|
|
1. w pomieszczeniach zaciemnionych 2. na tle ekranów: a) matowego czarnego b) matowego białego 3. oświetlenie boczne - 2 żarówki 60W
|
|
|
badanie jałowości r-rów do podania pozajelitowego start learning
|
|
1. pobranie 5ml próbki 2. wykonanie posiewu w odpowiednim podłożu (10ml)1. pobranie 5ml próbki 2. wykonanie posiewu w odpowiednim podłożu (10ml)
|
|
|
kontrola leków do podawania pozajelitowego start learning
|
|
zw. leczniczego i subst. pomocniczych 6. biologiczna 7. konsystencji r-rów i zawiesin olejowych 8. wypełnienia ampułek gazem obojętnym
|
|
|
destylacja termokompresyjna start learning
|
|
stos. temp 105 – 135 st. C i odpowiednie ciśn. Poprzez wprowadzenie pary wodnej do komory oczyszczającej dochodzi do odwirowania (przyspieszenie – ok 500x większe niż ziemskie) śladowych ilości np. jonów metali. Metoda ma zalety: 1.
|
|
|
destylacja termokompresyjna start learning
|
|
woda otrzymana jest wolna od mikrokropelek wody i sterylna 2. podczas procesu dochodzi do samosterylizacji aparatury, 3. aparatura bardzo szczelna, zużywa mało energii, niepotrzebna jest woda chłodząca
|
|
|
|
start learning
|
|
pasteryzacja frakcjonowana metoda konserwacji żywności która polega na trzykrotnej pasteryzacji przeprowadzanej co 24 godziny. Mechanizm działania: 1. pierwsza pasteryzacja zabija głównie
|
|
|
Promieniowanie jonizujące start learning
|
|
Źródłem tego promieniowania mogą być na przykład izotopy emitujące promieniowanie
|
|
|
Promieniowanie jonizujące start learning
|
|
gamma – zwykle używa się izotopu kobaltu 60Co. Metodę tę stosuje się do wyjaławiania materiałów termolabilnych – wyrobów medycznych jednorazowego użytku produktów leczniczych, kosmetyków oraz materiałów transplantacyjnych.
|
|
|
|
start learning
|
|
długości fali 254 nm), emitowanych np. przez lampy rtęciowe (niskociśnieniowa rura z kwarcu, wypełniona parami rtęci). wyjaławia się w ten sposób na ogół tylko powietrze lub powierzchnię przedmiotów.
|
|
|
